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Biologie · Licence 1 · 6 min de lecture

La PCR : copier des millions de fois une région choisie

Reproduire la réplication de l'ADN in vitro, mais sur une région choisie. Un cycle enchaîne trois températures : dénaturation, qui sépare les deux brins ; hybridation, où deux amorces courtes se fixent chacune sur un brin en encadrant la région d'intérêt ; élongation, où une ADN polymérase thermostable synthétise le brin complémentaire à partir de chaque amorce. Ce sont les AMORCES, et elles seules, qui choisissent la région amplifiée : le reste du génome est présent mais n'est pas recopié de façon exploitable. Le nombre de copies double à chaque cycle tant que les réactifs sont en excès, d'où une croissance géométrique de raison 2 ; il faut cependant trois cycles pour que la première molécule de longueur exactement définie par les deux amorces apparaisse, les produits des premiers cycles ayant une extrémité libre. La croissance finit par s'infléchir puis atteindre un plateau, quand les amorces ou les nucléotides s'épuisent et que les produits se réhybrident entre eux plus vite que les amorces ne les trouvent : conclure sur une quantité initiale à partir du produit final d'une PCR classique est donc un contresens. La température d'hybridation se choisit à partir de la température de fusion des amorces : trop basse, elles se fixent sur des sites approximatifs et l'on amplifie autre chose ; trop haute, elles ne se fixent plus du tout.

Chapitre du programme : Biologie moléculaire

Bloc 1 sur 7 · Comprendre

Comprendre : une cible, des amorces et un modèle

La PCR utilise un ADN matrice, des amorces, une polymérase, des nucléotides et des conditions de réaction adaptées pour amplifier une région. Une PCR simple utilise une paire d’amorces ; une PCR multiplex peut viser plusieurs régions. Un appariement non spécifique, une contamination ou des dimères d’amorces peuvent produire d’autres signaux.

Le cycle usuel sépare les brins par chauffage, permet l’hybridation des amorces, puis leur extension. Des repères comme 95 °C pour la séparation et 72 °C pour l’extension concernent des protocoles courants avec Taq ; ils ne sont pas des températures universelles de toutes les polymérases.

Une amorce doit fournir une extrémité 3′ utilisable. La polymérase ajoute des nucléotides dans le sens 5′→3′. Les deux sites et leur orientation encadrent la région qui peut croître exponentiellement. La complémentarité ne garantit pas à elle seule un site unique dans tout génome ; répétitions et mésappariements comptent.

La thermodynamique d’hybridation dépend des séquences, de l’empilement des bases, des sels et des concentrations. Compter seulement deux ou trois liaisons hydrogène ne suffit pas à calculer une température de fusion. Une polymérase thermostable supporte les cycles du protocole sans être éternellement insensible à la chaleur.

Bloc 2 sur 7 · Approfondir

Approfondir : copies, longueurs et réactifs

Le modèle de doublement idéal donne Nn=N02nN_n=N_0 2^n pour n entier positif ou nul. Il suppose une copie complète par brin à chaque cycle, sans perte ni limite. Avec des efficacités par cycle E_j, le modèle moyen devient Nn=N0∏j=1n(1+Ej)N_n=N_0\prod_{j=1}^n(1+E_j), avec 0≤E_j≤1 dans le cadre retenu. Ce nombre peut être une espérance, pas un compte entier garanti dans chaque tube.

La formule N0(2n−2n)N_0(2^n-2n) de molécules double brin exactement bornées s’applique pour n≥1 au modèle idéal partant de matrices double brin plus longues que la cible des deux côtés. Les premières apparaissent au cycle 3. Une matrice initiale déjà exactement bornée ne suit pas cette même correction. Les premiers produits longs ne sont pas tous des copies exactes ; l’extension complète et les conventions d’appariement sont des hypothèses de comptage.

Un plateau peut résulter de plusieurs facteurs : réactifs, activité enzymatique, réassociation des produits, produits non spécifiques ou inhibiteurs. Il n’est pas forcément au même niveau pour tous les tubes. L’épuisement d’un réactif est une borne de possibilité, pas la preuve de la forme complète d’une courbe.

Une bande finale de taille attendue n’identifie pas seule toute la séquence ni sa provenance. Un résultat négatif peut provenir de conditions techniques. Des témoins et, selon l’objectif, d’autres vérifications sont nécessaires. La qPCR utilise des mesures pendant l’amplification avec calibration et efficacité contrôlées ; une PCR finale peut parfois être semi-quantitative sous conditions, sans devenir une mesure universelle de la quantité initiale.

Bloc 3 sur 7 · Exemple

Exemple guidé : efficacité variable et borne d’amorces

Deux expériences alternatives, données construites. Le départ contient 3 matrices double brin plus longues que la cible.

A : cinq cycles de doublement idéal puis trois cycles avec efficacité moyenne E=0,5. Après cinq cycles : 3×25=963\times2^5=96. Après trois autres : 96(1,5)3=32496(1{,}5)^3=324 copies attendues. Le doublement idéal huit fois aurait donné 768. Le passage de l’espérance au-dessus de 300 arrive au huitième cycle : au septième, 96(1,5)2=21696(1{,}5)^2=216. Cela n’assure pas que chaque réalisation franchisse ce seuil à ce cycle.

B : on revient à un modèle entièrement idéal, mais chaque type d’amorce est limité à 700 molécules disponibles. Après n cycles, la consommation de chaque type vaut 3(2n−1)3(2^n-1) dans le modèle symétrique : chaque cycle ajoute des brins de chaque orientation. Au cycle 7, 381 amorces de chaque type ont été consommées ; au cycle 8, il en faudrait 765. L’hypothèse de doublement complet ne peut donc plus rester valide jusqu’à la fin du cycle 8. On ne déduit pas pour autant un nombre final exact ni un plateau de 700 copies.

Sous réactifs en excès, après quatre cycles idéaux on compterait 3(16−8)=243(16-8)=24 molécules double brin exactement bornées sur 48. Cette dernière formule ne s’applique pas telle quelle à A, où l’efficacité varie.

Bloc 4 sur 7 · Visualiser

Visualiser : la complémentarité ne montre pas une PCR

La figure partagée montre un fragment canonique d’ADN apparié et une hélice B approximative. Les formes symboliques et les pointillés illustrent l’appariement ; ils ne constituent pas une preuve qu’aucun mésappariement ne peut survenir.

Pour concevoir une amorce, il faut ajouter les extrémités 5′ et 3′ et préciser le sens dans lequel chaque séquence est écrite. Le complément face à face et le complément inversé écrit en 5′→3′ ne sont pas la même chaîne de caractères. La figure ne place ni les amorces, ni une polymérase, ni les cycles de température.

L’hybridation et la dénaturation modifient les interactions entre brins ; la synthèse ajoute des liaisons covalentes le long d’un nouveau brin. La figure ne permet pas de garantir l’absence de dégradation dans tout protocole ni une quantité finale de PCR. Elle est conservée sans nouvelle géométrie.

L'ADN : echelle de corde deroulee, double helice, et sequence complementaire — Modèle canonique d’un fragment d’ADN double brin entièrement apparié : A avec T et C avec G.
L'ADN : echelle de corde deroulee, double helice, et sequence complementaire · Ouvrir la figure en grand

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Sources

  • K. Mullis, F. Faloona, « Specific synthesis of DNA in vitro via a polymerase-catalyzed chain reaction », Methods in Enzymology, vol. 155, 1987, p. 335-350
  • A. Griffiths et al., Introduction à l'analyse génétique, De Boeck
  • B. Alberts et al., Biologie moléculaire de la cellule, Lavoisier
  • National Institute of Justice, DNA Amplification for Forensic Analysts, Amplification — https://nij.ojp.gov/nij-hosted-online-training-courses/dna-amplification/overview/amplification
  • National Institute of Justice, DNA Amplification for Forensic Analysts, Plateau Effect — https://nij.ojp.gov/nij-hosted-online-training-courses/dna-amplification/overview/primer-design/plateau-effect
  • National Institute of Justice, Primer Annealing Temperature — https://nij.ojp.gov/nij-hosted-online-training-courses/dna-amplification/overview/primer-design/primer-annealing-temperature

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